用途：
FluorPen FP 110葉綠素?zé)晒鈨x可在實(shí)驗(yàn)室、溫室或野外快速測(cè)量植物受生物或非生物脅迫后的光合活性狀態(tài)，具有攜帶方便、準(zhǔn)確度高、性價(jià)比高等特點(diǎn)；測(cè)量參數(shù)包括Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、NPQ等，還可以進(jìn)行OJIP分析和光響應(yīng)曲線動(dòng)力學(xué)研究。
PAR-FluorPen FP 110是FP 110的升級(jí)版，可以直接測(cè)量400-700nm范圍內(nèi)光合有效輻射PAR（umol/m2/s），光量子傳感器對(duì)400-700nm波段的光具有均勻的響應(yīng)，實(shí)時(shí)讀數(shù)為20個(gè)測(cè)量值的平均值。
測(cè)量的數(shù)據(jù)存儲(chǔ)于儀器內(nèi)部，通過藍(lán)牙或USB與計(jì)算機(jī)連接，采用專業(yè)的軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)傳輸和分析，數(shù)據(jù)可視化。
測(cè)量原理：利用調(diào)制熒光測(cè)量技術(shù)，內(nèi)置LED光源，內(nèi)設(shè)測(cè)量給光程序，測(cè)量并計(jì)算葉綠素?zé)晒庀鄳?yīng)的各種參數(shù)。
應(yīng)用領(lǐng)域：
適用于光合作用研究和教學(xué)，植物及分子生物學(xué)研究，農(nóng)業(yè)、林業(yè)，生物技術(shù)領(lǐng)域等。研究?jī)?nèi)容涉及光合活性、脅迫響應(yīng)、農(nóng)藥藥效測(cè)試、突變體篩選等。
植物光合特性和代謝篩選
生物和非生物脅迫的檢測(cè)
植物抗脅迫能力或者易感性研究
代謝紊亂研究
生長(zhǎng)長(zhǎng)勢(shì)與產(chǎn)量評(píng)估
植物——微生物交互作用研究
植物——原生動(dòng)物交互作用研究
軟件：
FluorPen 1.1版本，支持windows 7及更高版本
實(shí)時(shí)及遠(yuǎn)程控制功能
藍(lán)牙和USB通訊
可視化數(shù)據(jù)，可轉(zhuǎn)換成Excel格式
GPS地圖
參數(shù)介紹
Ft——非光化光下的實(shí)時(shí)熒光，暗適應(yīng)后Ft = Fo；
QY——PSII量子產(chǎn)量。暗適應(yīng)QY = Fv/Fm，光適應(yīng)QY = Fv’/Fm’;Fv/Fm是使用頻繁的熒光參數(shù)。
OJIP——葉綠素?zé)晒饪焖偎矐B(tài)分析是一種簡(jiǎn)單、非侵入性測(cè)量葉綠體功能的方法。OJIP分析可以靈敏、準(zhǔn)確的分析光化學(xué)系統(tǒng)的功能和活性。
NPQ——儀器提供2組測(cè)量程序，每組程序均有持續(xù)照光和黑暗恢復(fù)階段。
NPQ測(cè)量是一種典型的量化暗適應(yīng)后樣品光化學(xué)和非光化學(xué)淬滅的工具。
LC——儀器內(nèi)置3組光曲線測(cè)量程序，每組程序的脈沖數(shù)量、持續(xù)時(shí)間以及光強(qiáng)均不同。LC光曲線程序?qū)B續(xù)光照下不同光強(qiáng)照射的樣品光合作用進(jìn)行連續(xù)測(cè)量，將光合作用速率與光強(qiáng)聯(lián)系起來。
PAR——光合有效輻射（PAR-FluorPen FP 110版本具有此功能）
技術(shù)參數(shù)：
FP 110/S | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve；標(biāo)準(zhǔn)葉夾 |
FP 110/D | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve；可拆卸葉夾，葉夾單獨(dú)出售 |
FP 110/P | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve；室內(nèi)長(zhǎng)期測(cè)量 |
FP 110/X | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ和Light Curve；定制型開放葉夾，可在環(huán)境光下測(cè)量 |
PAR-FP 110/S | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm)；標(biāo)準(zhǔn)葉夾 |
PAR-FP 110/D | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm)；可拆卸葉夾，葉夾單獨(dú)出售 |
PAR-FP 110/X | Fo、Ft、Fm、Fm’、QY、OJIP、NPQ、Light Curve和PAR(400-700nm)；定制型開放葉夾，可在環(huán)境光下測(cè)量 |
光化光 | 10-100%可調(diào)，最大1000μmol(photon)/m2/s |
飽和光 | 10-100%可調(diào)，最大3000μmol(photon)/m2/s |
調(diào)制測(cè)量光 | 10-100%可調(diào)，最大0.09μmol(photon)/m2/脈沖 |
PAR測(cè)量 | 精度< 1%，最大3000μmol(photon)/m2/s（PAR-FP 110版本具有） |
余弦校準(zhǔn) | 80°入射角（PAR-FP 110版本具有） |
發(fā)射光源 | 藍(lán)色LED光源，470nm |
探測(cè)波長(zhǎng)范圍 | PIN光電二極管帶667~750nm濾光器 |
光學(xué)檢測(cè)光圈直徑 | 5mm(標(biāo)準(zhǔn)和開放葉夾)，6.5mm（可拆卸葉夾） |
NPQ1 | 光環(huán)境60s，5個(gè)脈沖；暗適應(yīng)恢復(fù)88s，3個(gè)脈沖。 |
NPQ2 | 光環(huán)境200s，10個(gè)脈沖；按適應(yīng)恢復(fù)390s，7個(gè)脈沖。 |
GPS | 內(nèi)置GPS模塊，輸出帶時(shí)間戳和地理位置的葉綠素?zé)晒鈪?shù)圖表 |
FluorPen 軟件 | 1.1版本，Windows 7或更高 |
內(nèi)存 | 16Mb，可存儲(chǔ)149000個(gè)數(shù)據(jù) |
顯示 | 2×8字符LCD顯示屏 |
按鍵 | 密封2鍵 |
自動(dòng)關(guān)機(jī) | 無操作8分鐘后自動(dòng)關(guān)機(jī) |
電源 | 可充電鋰電池；2000mAh |
電池電量 | 典型情況下可連續(xù)操作48個(gè)小時(shí)，低電量LCD顯示 |
通訊方式 | 藍(lán)牙和USB |
尺寸 | 134mm×65 mm×33 mm |
重量 | 188克 |
樣品固定器 | 機(jī)械式葉夾——標(biāo)準(zhǔn)葉夾，可拆卸葉夾 |
工作環(huán)境 | 溫度0~+55℃，相對(duì)濕度0~95%（非冷凝） |
存儲(chǔ)環(huán)境 | 溫度-10~+60℃，相對(duì)濕度0~95%（非冷凝） |
葉綠素?zé)晒?/span> | 反射比 | OD680/720 | PAR | 光譜 | 吸收/透射/反射光譜 | 葉面積指數(shù) | GPS | |
FluorPen | l | l | ||||||
PAR FluorPen | l | l | l | |||||
Monitoring Pen | l | l | l | |||||
AquaPen-C | l | l | l | |||||
AquaPen-P | l | l | ||||||
PlantPen NDVI&PRI | l | l | ||||||
N-Pen | l | l | ||||||
PolyPen | l | l | l | |||||
PolyPen-Aqua | l | l | l | |||||
SpectraPen LM | l | |||||||
SpectraPen LM | l | l | l | |||||
SpectraPen SP | l | l | ||||||
LaiPen | l | l | l |
案例介紹：
案例1：正常澆水與干旱脅迫下接種固氮螺菌屬及叢枝菌對(duì)水稻光合活性(Fv/Fm)的影響
WW：正常澆水
D：干旱脅迫
M：Glomus intraradices
A：Azospirillum brasilense
無論是正常澆水會(huì)干旱脅迫，接種兩種菌后水稻的光合效率均顯著增加，而兩種菌都接種的樣品，光合效率增加較多，水分條件對(duì)水稻的光合效率沒有顯著影響。
案列2：鹽脅迫對(duì)接種叢枝菌的萵苣光合活性(Fv/Fm)的影響
無論接種叢枝菌與否，隨著鹽度的增加，萵苣光合活性菌降低，80mM時(shí)的顯著低于0和40mM，表明高濃度鹽迫降低萵苣光合效率；無論什么鹽濃度下，接種叢枝菌的萵苣光合活性菌顯著高于未接種的，表明叢枝菌對(duì)萵苣的光合效率有顯著促進(jìn)作用，增加了萵苣的耐鹽性。
近期發(fā)表文獻(xiàn)：
AJIGBOYE O. O., LU CH., MURCHIE E. H., ET AL. (2017). Altered gene expression by sedaxane increases PSII efficiency, photosynthesis and growth and improves tolerance to drought in wheat seedlings. Pesticide Biochemistry and Physiology. Volume 137. Pages 49-61. DOI: 10.1016/j.pestbp.2016.09.008
CHEKANOV К., SCHASTNAYA E., SOLOVCHENKO A., ET AL. (2017). Effects of CO2 enrichment on primary photochemistry, growth and astaxanthin accumulation in the chlorophyte Haematococcus pluvialis. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. Volume 171. DOI 10.1016/j.jphotobiol.2017.04.028
DUARTE B., PEDRO S., MARQUES J. C., ET AL. (2017). Zostera noltii development probing using chlorophyll a transient analysis (JIP-test) under field conditions: Integrating physiological insights into a photochemical stress index. Ecological Indicators. Volume 76. DOI: 10.1016/j.ecolind.2017.01.023
HERNáNDEZ-CLEMENTE R., NORTH P.R.J., HORNERO A., ET AL. (2017). Assessing the effects of forest health on sun-induced chlorophyll fluorescence using the FluorFLIGHT 3-D radiative transfer model to account for forest structure, Remote Sensing of Environment,. Volume 193. Pages 165-179. DOI: 10.1016/j.rse.2017.02.012
LEE M. W., HUFFAKER A., CRIPPEN D., ET AL. (2017). Plant Elicitor Peptides Promote Plant Defenses against Nematodes in Soybean. Molecular Plant Pathology. DOI: 10.1111/mpp.12570MARTEL A. B. AND QADERI M. M. (2017). Light quality and quantity regulate aerobic methane emissions from plants. Physiol Plantarum. Volume 159. DOI:10.1111/ppl.12514
